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葡聚糖凝膠色譜層析柱圖結(jié)果怎么分析

2022.9.28

1.凝膠的預(yù)處理

交聯(lián)葡聚糖凝膠的市售商品多為干燥顆粒,使用前必須充分溶脹。方法是將欲使用的干凝膠緩慢地傾倒入5~10倍的去離子水中,參照相關(guān)資料中凝膠溶脹所需時(shí)間,進(jìn)行充分浸泡,然后用傾倒法除去表面懸浮的小顆粒,并減壓抽氣排除凝膠懸液中的氣泡,準(zhǔn)備裝柱。在許多情況下,也可采用加熱煮沸方法進(jìn)行凝膠溶脹,此法不僅能加快溶脹速率,而且能除去凝膠中污染的細(xì)菌,同時(shí)排除氣泡。

2.裝柱

層析柱的選擇一般根據(jù)分離樣品的種類和樣品的數(shù)量而定。純化蛋白質(zhì)時(shí),柱床體積應(yīng)為樣品體積的25~100倍。去除鹽及游離熒光素約為樣品體積的4~10倍。柱太短,影響分離效果。柱長一些,分離效果好,但柱太長,則延長分離時(shí)間,樣品也稀釋過度。層析柱的內(nèi)徑也要選擇適當(dāng)。內(nèi)徑過細(xì),會(huì)發(fā)生“器壁效應(yīng)”,即靠近管壁的流速要大于中心的流速影響分離效果。所以層析柱的內(nèi)徑和高度應(yīng)有一定的比例。對(duì)于除鹽來說應(yīng)為1︰5~1︰25;對(duì)于純化蛋白質(zhì)來說應(yīng)為1︰20~1︰100。

凝膠柱的裝填方法和要求,基本上與離子交換柱的制備相同。一根理想的凝膠柱要求柱中的填料(凝膠)密度均勻一致,沒有空隙和氣泡。通常新裝的凝膠柱用適當(dāng)?shù)木彌_溶液平衡后,將帶色的蘭葡聚糖–2000、細(xì)胞色素,或血紅蛋白等物質(zhì)配制成質(zhì)量濃度為2g/L的溶液過柱,觀察色帶是否均勻下移,以鑒定新裝柱的技術(shù)質(zhì)量是否合格,否則,必須重新裝填。

3.加樣與洗脫

(1)加樣量:加樣量與測(cè)定方法和層析柱大小有關(guān)。如果檢測(cè)方法靈敏度高或柱床體積小,加樣量可?。环駝t,加樣量增大。例如利用凝膠層析分離蛋白質(zhì)時(shí),若采用28Onm波長測(cè)定吸光度,對(duì)一根2cm×6Ocm的柱來說,加樣量需5mg左右。一般來說,加樣量越少或加樣體積越小(樣品濃度高),分辨率越高。通常樣品液的加入量應(yīng)掌握在凝膠床總體積的5%~10%。樣品體積過大,分離效果不好。
對(duì)高分辨率的分子篩層析,樣品溶液的體積主要由內(nèi)水體積(Vi)所決定,故高吸水量凝膠如Sephadex G-200,每mL總床體積可加0.3~0.5mg溶質(zhì),使用體積約為0.O2倍總體積;而低吸水量凝膠如Sephadex G–75,每mL總床體積加溶質(zhì)質(zhì)量為0.2mg,樣品體積為0.Ol倍總體積。

(2)加樣方法:如同離子交換柱層析一樣,凝膠床經(jīng)平衡后,吸去上層液體,待平衡液下降至床表面時(shí),關(guān)閉流出口,用滴管加入樣品液,打開流出口,使樣品液緩慢滲入凝膠床內(nèi)。當(dāng)樣品液面恰與凝膠床表面持平時(shí),小心加入數(shù)mL洗脫液沖洗管壁。然后繼續(xù)用大量洗脫液洗脫。

(3)洗脫:加完樣品后,將層析床與洗脫液儲(chǔ)瓶、檢測(cè)儀、分部收集器及記錄儀相連,根據(jù)被分離物質(zhì)的性質(zhì),預(yù)先估計(jì)好一個(gè)適宜的流速,定量地分部收集流出液,每組分一至數(shù)mL。各組分可用適當(dāng)?shù)姆椒ㄟM(jìn)行定性或定量分析。

凝膠柱層析一般都以單一緩沖溶液或鹽溶液作為洗脫液,有時(shí)甚至可用蒸餾水。洗脫時(shí)用于流速控制的裝置最好的是恒流泵。若無此裝置,可用控制操作壓的辦法進(jìn)行。樣品體積不宜過多,最好為床體積的1%~5%,最多不要超過10%。樣品濃度也不宜過大,濃度過大粘度大,分離效果差,一般不超過4%。

洗脫液應(yīng)與膨脹一致,否則更換溶劑,凝膠體積會(huì)發(fā)生變化,影響分離效果。洗脫液要有一定的離子強(qiáng)度和pH值。分離血清蛋白常用0.02~0.1Mol/L pH 6.9~8.0的PBS液(0.14Mol/L NaCl)和0.1Mol/L pH8.0Tris-HCl緩沖鹽溶液(0.14Mol/L NaCl)。

凝膠再生和保存

凝膠層析的載體不會(huì)與被分離的物質(zhì)發(fā)生任何作用,因此凝膠柱在層析分離后稍加平衡即可進(jìn)行下一次的分離操作。但使用多次后,由于床體積變小,流動(dòng)速率降低或雜質(zhì)污染等原因,使分離效果受到影響。此時(shí)對(duì)凝膠柱需進(jìn)行再生處理,其方法是:先用水反復(fù)進(jìn)行逆向沖洗,再用緩沖溶液平衡,即可進(jìn)行下一次分離。
對(duì)使用過的凝膠,若短時(shí)間保存,只要反復(fù)洗滌除去蛋白質(zhì)等雜質(zhì),加入適量防腐劑即可;若長期保存,則需將凝膠從柱中取出,進(jìn)行洗滌、脫水和干燥等處理后,裝瓶保存。

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